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細(xì)胞活力概述

日期:2023-12-06 16:02:00

細(xì)胞基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)是用于研究許多生化或細(xì)胞功能的通用工具,包括細(xì)胞增殖、形態(tài)學(xué)、遷移、凋亡、遺傳學(xué)和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等。與體內(nèi)研究相比,體外細(xì)胞基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)更便宜,并且可以高通量進(jìn)行。細(xì)胞基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)通常用于細(xì)胞毒性測(cè)試,以評(píng)估藥物的功效,確定主要研究的作用機(jī)制(MOA),以及確定患者產(chǎn)生的抗體是否能中和藥物產(chǎn)品。細(xì)胞基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)的前提是確保培養(yǎng)基中的細(xì)胞是活的。在進(jìn)行細(xì)胞基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)之前,應(yīng)該評(píng)估細(xì)胞存活率。細(xì)胞存活的確定在所有形式的細(xì)胞培養(yǎng)中都起著重要作用[1]

在本文中,我們將從六個(gè)方面介紹細(xì)胞存活率,包括定義、檢測(cè)意義、指標(biāo)、檢測(cè)方法、不同檢測(cè)方法的比較,以及存活率、活力和增殖之間的區(qū)別。


 

1. 什么是細(xì)胞存活率?

細(xì)胞存活率是一個(gè)群體中存活細(xì)胞的比例測(cè)量。細(xì)胞存活率是一個(gè)以百分比表示的相對(duì)測(cè)量。它通常與細(xì)胞健康和細(xì)胞群體的生存和成功功能能力相一致。


 

2. 為什么要測(cè)量細(xì)胞存活率?

細(xì)胞存活率的測(cè)量旨在量化樣本中的整體健康細(xì)胞,并評(píng)估細(xì)胞對(duì)各種處理和刺激的反應(yīng)。

例如,細(xì)胞存活率測(cè)定有助于篩選化學(xué)物質(zhì)對(duì)各種細(xì)胞的細(xì)胞毒性,并在癌癥化療中選擇抗癌藥物及其劑量。

測(cè)量從組織中分離的細(xì)胞的存活率,以了解分離過(guò)程是否損傷了細(xì)胞。

在復(fù)蘇后,應(yīng)該檢查細(xì)胞存活率,以了解冷凍和復(fù)蘇的影響。

有時(shí),細(xì)胞存活率測(cè)定也用于優(yōu)化細(xì)胞培養(yǎng)或環(huán)境條件。

或者,細(xì)胞變異性可以用于相關(guān)細(xì)胞行為以及細(xì)胞數(shù)量,從而提供對(duì)細(xì)胞代謝的詳細(xì)分析。


 

3. 什么是細(xì)胞存活率的指標(biāo)?

細(xì)胞存活率反映了細(xì)胞群體的整體健康情況。因此,細(xì)胞膜滲透性、細(xì)胞代謝活性、ATP產(chǎn)生、酶活性和增殖能力可以指示細(xì)胞的存活率 [2]


 

4. 細(xì)胞存活率檢測(cè)方法

細(xì)胞存活率可以通過(guò)許多方法進(jìn)行評(píng)估,從最簡(jiǎn)單且廣泛使用的染料排除法到對(duì)ATP含量和酶活性進(jìn)行高度復(fù)雜的分析。選擇最佳的存活率測(cè)定方法應(yīng)該詳細(xì)考慮細(xì)胞類型、應(yīng)用的培養(yǎng)條件以及所需設(shè)備的成本、速度和復(fù)雜性。

 

4.1 染料排除法

染料排除法是用于細(xì)胞存活率鑒定的簡(jiǎn)單且最常用的方法之一。染料排除法的原理是死細(xì)胞會(huì)吸收染料并變色,而活細(xì)胞會(huì)排除染料,因?yàn)樗鼈兙哂型暾募?xì)胞膜。因此,可以使用血細(xì)胞計(jì)數(shù)器計(jì)算死細(xì)胞(著色)或存活細(xì)胞(無(wú)色)的數(shù)量。在多種使用的染料中,嘗試藍(lán)是其中最常用的。在嘗試藍(lán)染色中,死細(xì)胞被染成藍(lán)色,活細(xì)胞則不被染色[3]。然而,凋亡細(xì)胞在染料排除法中也被計(jì)算為存活細(xì)胞,因?yàn)樗鼈兊募?xì)胞膜仍然完整。因此,在可靠的細(xì)胞存活率和健康研究中,通常會(huì)通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)測(cè)量凋亡細(xì)胞的水平以及存活細(xì)胞的數(shù)量。

 

4.2 細(xì)胞增殖測(cè)定

健康細(xì)胞會(huì)積極增殖,而受限、老化、死亡或垂死的細(xì)胞則不能。因此,細(xì)胞增殖測(cè)試是評(píng)估細(xì)胞存活率的有用工具。通過(guò)測(cè)量DNA合成和免疫染色細(xì)胞周期特異性蛋白質(zhì)可以進(jìn)行細(xì)胞增殖測(cè)定。許多生物公司開(kāi)發(fā)了基于熒光微孔板的細(xì)胞增殖測(cè)定試劑盒,用于定量細(xì)胞并評(píng)估細(xì)胞增殖。最常用的增殖蛋白包括增殖細(xì)胞核抗原(PCNA)[4]、MKI67 [5]、磷酸組蛋白H3(H3-3A)[6]和MCM2 [7],可以通過(guò)WB、IF、IHC、流式細(xì)胞術(shù)和ELISA進(jìn)行檢測(cè)。

 

4.3 比色法測(cè)定

代謝活性通常通過(guò)檢測(cè)細(xì)胞還原能力來(lái)評(píng)估。在活細(xì)胞中,NADPH將四唑鹽,包括MTT、MTS和XTT還原為紫色的嗎啉衍生物。MTT比色法是第一種用于適用于高通量篩選(HTS)的96孔板格式的均質(zhì)細(xì)胞存活率測(cè)定方法 [8] [9]。在存活細(xì)胞中,黃色的MTT被還原為紫色的嗎啉。MTT測(cè)定中產(chǎn)生的嗎啉衍生物的數(shù)量通過(guò)在560 nm處通過(guò)分光光度法記錄吸光度讀數(shù)來(lái)測(cè)量,并且與存活細(xì)胞的數(shù)量直接成正比。MTS方法在原理上與MTT測(cè)定類似,但在靈敏度和操作上更高 [10]

MTT試驗(yàn)

圖. MTT試驗(yàn)

 

4.4 生物發(fā)光測(cè)定法

生物發(fā)光測(cè)定法可以快速、簡(jiǎn)單地確定哺乳動(dòng)物細(xì)胞的細(xì)胞增殖和細(xì)胞毒性。細(xì)胞增殖和細(xì)胞毒性可以間接反映細(xì)胞存活率。

● ATP測(cè)定

基于ATP的細(xì)胞存活率測(cè)定是一種敏感可靠的方法。只有存活細(xì)胞能夠合成ATP。內(nèi)源性ATP是活細(xì)胞最基本的能源來(lái)源。當(dāng)細(xì)胞死亡時(shí),ATP會(huì)迅速水解。因此,內(nèi)源性ATP含量的測(cè)定可以及時(shí)反映細(xì)胞的活性和存活率。

基于ATP的細(xì)胞存活率測(cè)定的反應(yīng)原理是,在Mg2+和ATP的存在下,熒光酶催化熒光素氧化為氧化熒光素,產(chǎn)生與細(xì)胞內(nèi)ATP濃度成比例的發(fā)光信號(hào) [11-13]。因此,產(chǎn)生的信號(hào)強(qiáng)度間接地反映了存活細(xì)胞的相對(duì)數(shù)量 [14]

● 實(shí)時(shí)存活率測(cè)定

實(shí)時(shí)存活率測(cè)定是一種新開(kāi)發(fā)的生物發(fā)光測(cè)定法,可以在整個(gè)時(shí)間過(guò)程中監(jiān)測(cè)細(xì)胞的生長(zhǎng)。Duellman SJ及其同事在細(xì)胞培養(yǎng)基中添加了一種小分子前底物和一種源自海洋蝦的工程熒光酶作為試劑。需要注意的是,前底物不是熒光酶的底物。在活細(xì)胞中,前底物被還原為底物,熒光酶催化產(chǎn)生發(fā)光信號(hào)。該發(fā)光信號(hào)可以在長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)從樣品孔中重復(fù)記錄,以實(shí)時(shí)測(cè)量細(xì)胞數(shù)量 [15]。

 

4.5 酶活性

與非存活細(xì)胞不同,存活細(xì)胞具有神秘的活性。酯酶活性,作為底物的衡量,例如不發(fā)光的細(xì)胞可滲透染料羧基氟熒光素二乙酸酯(CFDA),通常用作總體酶活性的指標(biāo)。進(jìn)入活細(xì)胞后,細(xì)胞內(nèi)酯酶將CFDA水解為羧基氟熒光素,這是一種帶負(fù)電的熒光分子。羧基氟熒光素在活細(xì)胞中不共價(jià)地保留,并產(chǎn)生綠色熒光。發(fā)光強(qiáng)度與存活細(xì)胞的數(shù)量正相關(guān)。


 

5. 不同檢測(cè)方法的比較

上述細(xì)胞存活率測(cè)定法各有優(yōu)劣。下表分別列出了它們的特點(diǎn)。

細(xì)胞活力測(cè)定 優(yōu)點(diǎn) 缺點(diǎn)
染料排除試驗(yàn) 簡(jiǎn)單迅速的;低成本;需要少量的細(xì)胞;可以檢測(cè)非分裂細(xì)胞群中死亡的細(xì)胞。 有些染料對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞有毒副作用;難以同時(shí)處理大量樣品;最終結(jié)果不是很準(zhǔn)確(包括凋亡細(xì)胞的數(shù)量)。
細(xì)胞增殖抑制試驗(yàn) 準(zhǔn)確可靠 耗時(shí)
 比色法 使用方便、安全、快速、可靠、靈敏、經(jīng)濟(jì)、可重復(fù)性強(qiáng)。 許多因素,包括酶調(diào)節(jié)、pH、細(xì)胞離子濃度、孵育時(shí)間、細(xì)胞類型和數(shù)量都可能影響最終結(jié)果。
Bioluminometric 化驗(yàn) 速度快,靈敏,簡(jiǎn)單。 ATP測(cè)定的靈敏度通常受到移液重復(fù)樣品的可重復(fù)性的限制;最終代謝活性細(xì)胞對(duì)前底物的消耗限制了實(shí)時(shí)測(cè)定的結(jié)果。
酶活性 CFDA對(duì)細(xì)胞無(wú)毒 受試化合物的熒光干擾可能影響最終結(jié)果

 

6. 細(xì)胞存活率、細(xì)胞活力和細(xì)胞增殖

細(xì)胞存活率、細(xì)胞活力和細(xì)胞增殖是細(xì)胞的三種不同生理狀態(tài)。它們都反映了細(xì)胞是活著的。然而,存活率是對(duì)細(xì)胞群體中存活細(xì)胞數(shù)量的量化,而細(xì)胞增殖是在一段時(shí)間內(nèi)測(cè)量細(xì)胞數(shù)量的指標(biāo) [16]。細(xì)胞存活率測(cè)定方法,如染料排除法,只是區(qū)分活細(xì)胞和死細(xì)胞。細(xì)胞增殖的測(cè)量可以監(jiān)測(cè)一段時(shí)間內(nèi)細(xì)胞數(shù)量、細(xì)胞分裂次數(shù)、代謝活性或DNA合成。然而,并非所有存活細(xì)胞都會(huì)分裂。盡管細(xì)胞增殖可以輕松解釋為存活率,但非增殖不應(yīng)自動(dòng)被視為細(xì)胞死亡的標(biāo)志。

除了細(xì)胞死亡,化學(xué)或物理因素的毒性效應(yīng)可能導(dǎo)致細(xì)胞凋亡或壞死(細(xì)胞代謝和生理后果阻止細(xì)胞分裂),但細(xì)胞本身仍然可能存活 [17]。這種現(xiàn)象被稱為“細(xì)胞活力”,即細(xì)胞的生理能力。

目前,在毒理學(xué)和藥理學(xué)領(lǐng)域已經(jīng)應(yīng)用了各種細(xì)胞存活率測(cè)定方法。理想的體外存活率測(cè)定方法應(yīng)該是快速、安全、可靠、高效、及時(shí)和經(jīng)濟(jì),并且不干擾測(cè)試化合物。測(cè)試化合物的作用模式、組織或細(xì)胞類型在研究中的使用也會(huì)影響細(xì)胞存活率測(cè)定方法的性能。因此,在選擇測(cè)試方法之前最好嘗試并比較不同的方法。如果可能,在體外研究中應(yīng)該使用多種檢測(cè)方法來(lái)確定細(xì)胞存活率,從而獲得可靠和準(zhǔn)確的結(jié)果。



參考文獻(xiàn):

[1] Martin J Stoddart. Cell viability assays: introduction [J]. Methods Mol Biol. 2011;740:1-6.

[2] Ishiyama M, Tominaga H, et al. Combined assay of cell viability and in vitro cytotoxicity with a highly water-soluble tetrazolium salt, neutral red and crystal violet [J]. Biological & Pharmaceutical Bulletin. 1996;19(11):1518-1520.

[3] Strober W. Trypan blue exclusion test of cell viability [J]. Current Protocols in Immunology. 2001;21(3B):A.3B.1-A.3B.2.

[4] Wojciech Strzalka and Alicja Ziemienowicz. Proliferating cell nuclear antigen (PCNA): a key factor in DNA replication and cell cycle regulation [J]. Ann Bot. 2011 May; 107(7): 1127–1140.

[5] Scholzen T, Gerdes J. The Ki-67 protein: from the known and the unknown [J]. J Cell Physiol. 2000;182:311-22.

[6] Hu C, Wang W, et al. Vertebrate diapause preserves organisms long term through Polycomb complex members [J]. Science. 2020;367:870- 874.

[7] Coolen M, Labusch M, et al. Mosaic Heterochrony in Neural Progenitors Sustains Accelerated Brain Growth and Neurogenesis in the Juvenile Killifish N. furzeri [J]. Curr Biol. 2020;30:736-745.e4.

[8] Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assays [J]. J. Immunol. Meth. 1983;65:55–63.

[9] László Kupcsik. Estimation of cell number based on metabolic activity: the MTT reduction assay [J]. Methods Mol Biol. 2011;740:13-9.

[10] Berridge M, Herst P, et al. Tetrazolium dyes as tools in cell biology: new insights into their cellular reduction [J]. Biotechnol Annu Rev. 2005;11:127-52.

[11] Mueller H, Kassack MU, et al. Comparison of the usefulness of the MTT, ATP and calcein assays to predict the potency of cytotoxic agents in various human cancer cell lines [J]. Journal of Biomolecular Screening. 2004;9:506-515.

[12] Lundin A, Hasenson M, et al. Estimation of biomass in growing cell lines by adenosine triphosphate assay [J]. Methods Enzymol. 1986;133:27-42.

[13] Crouch S, Kozlowski R, et al. The use of ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity [J]. J Immunol Methods. 1993;160:81-8.

[14] Andreotti PE, Cree IA, et al. Chemosensitivity testing of human tumors using a microplate adenosine triphosphate luminescence assay: Clinical correlation for cisplatin resistance of ovarian cancer [J]. Cancer Research. 1995;55:5276-5282.

[15] Duellman SJ, Zhou W, et al. Bioluminescent, nonlytic, real-time cell viability assay and use in inhibitor screening [J]. Assay and Drug Development Technologies. 2015;13(8):456-465.

[16] N.Yang, S.D.Ray, et al. Cell Proliferation [J]. Encyclopedia of Toxicology (Third Edition) 2014, Pages 761-765.

[17] Magdalena Kwolek-Mirek and Renata Zadrag-Tecza. Comparison of methods used for assessing the viability and vitality of yeast cells [J]. FEMS Yeast Research, Volume 14, Issue 7, November 2014, Pages 1068–1079.